一、β-榄香烯诱导结肠癌Lovo细胞凋亡的作用（论文文献综述）
王乔宇,赵志刚[1]（2020）在《榄香烯抗肿瘤作用机制研究进展》文中进行了进一步梳理榄香烯是从传统中草药姜科植物温郁金中提取的萜烯类化合物。榄香烯乳注射液主要成份为β-、γ-、δ-榄香烯混合液,作为我国自主开发研制的抗肿瘤植物化学药于1995年被国家批准为2类抗肿瘤新药并成功上市。20多年的临床广泛应用使得人们在榄香烯的抗肿瘤研究方面积累了宝贵的经验。有关榄香烯基础研究方面的循证医学证据层出不穷,研究结果证实榄香烯具有抗瘤谱广、临床疗效确切、毒副作用小等特点。同时榄香烯不同于其他传统的细胞毒性化疗药物,在发挥直接抗肿瘤作用的基础上,还能通过多种机制起到逆转肿瘤细胞耐药、抑制转移、提高机体免疫力,与放化疗联用具有减毒增效等作用。对榄香烯乳注射液抗肿瘤作用机制进行综述。
吴敏,李丽,顾文燕[2]（2020）在《β-榄香烯对结肠癌细胞耐长春新碱的影响》文中认为目的:观察β-榄香烯对结肠癌细胞（SW-480）耐长春新碱（vincristine,VCR）的影响。方法:体外传代培养SW-480细胞,采用CCK8法检测β-榄香烯和VCR对SW-480细胞增殖活力的影响;流式细胞仪检测β-榄香烯和VCR对SW-480细胞凋亡的影响;Western Blot方法分析β-榄香烯对细胞中WEE1蛋白表达的影响,并采用pc DFNA-WEE1质粒过表达技术对SW-480细胞中WEE1蛋白进行过表达。结果:β-榄香烯可以诱导VCR对结肠癌SW-480细胞增殖活力的抑制作用;β-榄香烯+VCR联合组SW-480细胞凋亡率为（35.12±6.39）%,高于VCR干预组的（22.66±5.37）%（P<0.05）;β-榄香烯呈剂量、时间依赖性地抑制SW-480细胞中WEE1激酶的表达（P<0.05）;pcDFNA-WEE1质粒转染能明显上调SW-480细胞中WEE1激酶表达,并且降低了β-榄香烯+VCR对结肠癌SW-480细胞增殖活力的抑制作用（P<0.05）。结论:β-榄香烯通过抑制WEE1表达,增强VCR对结肠癌细胞化疗敏感性的能力,并促使结肠癌细胞凋亡。
李艺[3]（2020）在《β-榄香烯对人乳腺癌MCF-7细胞株体内外生长的影响及机制研究》文中提出乳腺癌是女性中最常见的恶性肿瘤,全世界每年有超过一百万的新发病例。该疾病在肺癌,肝癌,胃癌和结肠直肠癌之后排在第五位,且发病率随着年龄的增长而增加。根据肿瘤大小,肿瘤类型,肿瘤等级,淋巴结状态或激素受体状态,进行相应的治疗策略,如手术、靶向治疗、激素治疗、化学疗法、放射疗法或两者结合。实际上,这些治疗方法都会对健康组织造成不良损害。此外,许多因素也可能导致治疗失败,例如手术后残留的癌细胞,对化学疗法的抵抗力,针对治疗的生理障碍,如血脑屏障和阻碍获得治疗的细胞屏障。因此,需要副作用小且有效低毒的天然化学治疗剂。β-榄香烯是从莪术中提取的一种倍半萜类活性化合物,它已被国家食品药品监督管理局批准用于抗癌治疗,包括脑癌,前列腺癌,卵巢癌和肺癌。β-榄香烯具有广泛的抗肿瘤活性,它可以抑制细胞增殖,诱导细胞凋亡,抑制新生血管形成,抑制肿瘤侵袭和转移。β-榄香烯是一种天然植物来源的成分,因其安全性和较少的不良反应,使其成为癌症治疗的有效药物。尽管β-榄香烯可以诱导各种肿瘤细胞凋亡,但关于β-榄香烯抑制乳腺癌细胞MCF-7生长的体内外研究很少,其机制尚不明确。本课题探究β-榄香烯对乳腺癌的治疗效果,并进一步探索其涉及的分子机制。目的:探究β-榄香烯在体内外抑制乳腺癌细胞MCF-7生长及相关分子机制。方法:1体内实验:雌性SPF级BALB/c裸鼠（35-42天）,体重16-18g,构建人乳腺癌MCF-7细胞裸鼠移植瘤模型后,随机分为模型组、50mg/kgβ-榄香烯组（低剂量组）、100mg/kgβ-榄香烯组（高剂量组）和25mg/kg5-FU组（阳性对照组）,每组六只。β-榄香烯给药组和阳性对照5-FU组隔天每只腹腔注射给药一次,模型组给予相同体积的0.9%Na Cl溶液。每2天称量各组裸鼠重量,并在实验过程中每3天使用游标卡尺测量各组裸鼠的肿瘤大小,21天后麻醉处死裸鼠,分离瘤体并称重,于4%多聚甲醛溶液中固定。计算各组瘤块体积和移植性肿瘤抑制率,HE染色用于观察各组肿瘤细胞的形态差异。TUNEL染色用于评估β-榄香烯对肿瘤细胞凋亡的影响,细胞增殖相关的核抗原（Ki-67）染色用于评估人乳腺癌MCF-7细胞裸鼠移植瘤的增殖,免疫组化法检测LOX和Cyclin D1蛋白表达水平,免疫荧光法检测p-mTOR蛋白表达水平。2体外实验:选取人乳腺癌细胞MCF-7,设置实验组和对照组,用不同浓度的β-榄香烯处理实验组MCF-7细胞。采用MTS法、克隆形成实验和羧基荧光素乙酰乙酸（CFDA-SE）染色法检测细胞增殖,在流式细胞仪（Beckman Coulter）上检测乳腺癌细胞周期,Hoechst 33258染色法检测MCF-7细胞凋亡形态及荧光强度,JC-1染色法检测细胞线粒体膜电位变化,Annexin V/PI双染色法检测β-榄香烯对乳腺癌细胞凋亡率变化,Western blot法检测Cleaved Caspase-9、Caspase-9、Cleaved Caspase-7、Caspase-7、Cleaved Caspase-3、Caspase-3、Bax、Bcl-2、Cyclin D1、Cyclin D3、CDK2、CDK4、CDK6、p18、p21、p27、LOX、mTOR和p-mTOR蛋白在乳腺癌细胞MCF-7中表达水平。结果:1β-榄香烯对乳腺癌移植瘤生长的影响1.1β-榄香烯对MCF-7裸鼠移植瘤体积、重量及抑瘤率的影响模型组裸鼠体重先增加后降低,给药组体重一直在增加。给药组与模型组间体重无显着差别,说明β-榄香烯对裸鼠体重影响不大;给药组的肿瘤体积均小于模型组,且差异具有统计学意义（p<0.05）。肿瘤质量抑制率结果显示,与模型组比较,β-榄香烯（50mg/kg）对MCF-7裸鼠移植瘤的质量抑制率为76.17%,β-榄香烯（100mg/kg）抑制率为83.17%,阳性对照组抑制率为71.58%。1.2β-榄香烯对人乳腺癌MCF-7裸鼠移植瘤增殖的影响HE染色结果显示,与模型组相比,β-榄香烯（50,100mg/kg）肿瘤组织坏死灶显着增加,胞浆淡染,其中β-榄香烯（100mg/kg）效果最为显着,阳性对照组与β-榄香烯（50mg/kg）次之。Ki-67结果显示,与模型组相比,阳性对照组和β-榄香烯（50,100mg/kg）组肿瘤组织中阳性细胞数量减少,Ki-67表达明显降低。1.3β-榄香烯对人乳腺癌细胞移植瘤凋亡的作用TUNEL染色结果显示,与模型组相比,β-榄香烯（50,100mg/kg）可以显着增加绿色荧光细胞数量,细胞荧光强度越来越强,并且乳腺癌细胞显现出凋亡形态,这些结果表明β-榄香烯可以诱导MCF-7异种移植瘤的细胞凋亡。1.4β-榄香烯对MCF-7细胞LOX、Cyclin D1和p-mTOR蛋白表达的影响免疫组织化学分析显示,与模型组相比,β-榄香烯（50,100mg/kg）显着降低LOX和Cyclin D1蛋白的表达。免疫荧光法显示,β-榄香烯降低了肿瘤细胞中p-mTOR蛋白的水平。这些结果表明β-榄香烯能抑制LOX和Cyclin D1蛋白的表达,抑制mTOR蛋白磷酸化。2β-榄香烯对人乳腺癌细胞MCF-7的作用2.1β-榄香烯对MCF-7细胞增殖的影响人乳腺癌细胞MCF-7经过不同浓度β-榄香烯（50,100,200,300,400μmol/L）处理,并于24、48、72h后应用于MTS试验。结果显示,β-榄香烯对MCF-7细胞活力的抑制作用呈剂量和时间依赖性。β-榄香烯浓度为400μmol/L,时间为72h时,抑制作用最显着。克隆形成实验结果显示,随着β-榄香烯（100,200,300μmol/L）浓度的增加,β-榄香烯显着抑制人乳腺癌细胞MCF-7克隆形成（p<0.05）。CFDA-SE染色法显示,与空白对照相比,随着β-榄香烯（100,200,300μmol/L）浓度增加,细胞荧光强度也逐渐增强。2.2β-榄香烯促进MCF-7细胞凋亡相对于空白对照组,随着β-榄香烯浓度（100,200,300μmol/L）的增加,一些MCF-7细胞的细胞核变得破碎,核染色质浓缩,β-榄香烯促进了MCF-7细胞膜磷脂酰丝氨酸外翻,降低了细胞线粒体膜电位,β-榄香烯（100,200,300μmol/L）增加凋亡相关蛋白Cleaved Caspase-3、Cleaved Caspase-7、Cleaved Caspase-9和Bax的表达水平,降低凋亡相关蛋白Caspase-3、Caspase-7、Caspase-9和Bcl-2的表达水平,促进了Caspase-3、Caspase-7和Caspase-9蛋白发生剪切,这些结果表明,β-榄香烯能够诱导人乳腺癌细胞发生凋亡。2.3β-榄香烯对人乳腺癌细胞MCF-7周期的影响相对于空白对照组,随着β-榄香烯浓度（100,200,300μmol/L）的增加,β-榄香烯以浓度依赖的方式显着增加了MCF-7细胞在G2/M期的比例,表明β-榄香烯使乳腺癌细胞MCF-7细胞周期阻滞于G2/M期。与空白对照组比较,β-榄香烯（100,200,300μmol/L）降低了周期相关蛋白CDK6、Cyclin D1、Cyclin D3、p18、p21和p27的表达水平,而CDK4蛋白表达升高。但CDK2蛋白的水平没有显着变化,这些结果表明β-榄香烯能将乳腺癌细胞MCF-7周期阻滞在G2/M期。2.4β-榄香烯对MCF-7细胞LOX、p-mTOR和mTOR蛋白表达的影响相对于空白对照组,随着β-榄香烯（100,200,300μmol/L）浓度的增加,p-mTOR和LOX蛋白的表达水平下降,mTOR总蛋白无显着变化,这些结果表明β-榄香烯能下调LOX蛋白水平,抑制mTOR蛋白的磷酸化表达。结论:β-榄香烯可以显着抑制裸鼠体内乳腺癌异种移植瘤的生长,其抗肿瘤作用可能与β-榄香烯抑制增殖和诱导凋亡相关。β-榄香烯抑制体外人乳腺癌细胞MCF-7增殖,诱导乳腺癌细胞凋亡和周期阻滞的发生,体内体外实验均表明β-榄香烯对乳腺癌的治疗作用与降低LOX和Cyclin D1蛋白水平以及抑制乳腺癌细胞mTOR磷酸化有关。
沈展,陈文斌[4]（2019）在《转铁蛋白功能化的β-榄香烯-雷公藤红素共传递微乳协同靶向抗结直肠癌研究》文中进行了进一步梳理目的验证转铁蛋白修饰的β-榄香烯-雷公藤红素共传递微乳（Tf-EC-MEs）协同靶向抗结直肠癌作用。方法采用四甲基偶氮唑盐（MTT）法检测β-榄香烯、雷公藤红素及联合给药对结直肠癌Lovo细胞和结肠癌HT-29细胞的细胞毒活性,优化最佳质量配比;采用"混匀-滴注"方法制备Tf-EC-MEs,并利用高效液相（HPLC）、激光粒度仪、透射电镜等表征粒子的制剂学及理化性质;采用MTT法、高效液相-二喹啉甲酸（HPLC-BCA）法、膜联蛋白V-PE/7-氨基放线菌素D（Annexin V-PE/7-AAD）试剂盒考察Tf-EC-MEs的体外抗肿瘤活性及对细胞摄取、细胞凋亡的影响;sc Lovo细胞制备荷瘤裸鼠模型,每隔2d分别iv给予β-榄香烯+雷公藤红素、β-榄香烯-雷公藤红素共传递微乳（EC-MEs）、Tf-EC-MEs,考察Tf-EC-MEs对小鼠肿瘤生长、体质量及生存时间的影响。结果β-榄香烯-雷公藤红素40∶1联合给药对Lovo和HT-29细胞的半数抑制浓度（IC50）分别为（17.5±2.9）、（36.4±3.6）μg/mL,联合指数（CI）分别为0.89和0.96,具有明显的协同抗结直肠癌效应;Tf-EC-MEs对Lovo和HT-29细胞的IC50分别为（11.7±0.6）和（27.4±1.2）μg/mL,CI分别为0.61和0.72。Tf-EC-MEs与Lovo细胞孵育4 h后的摄取量为7.2μg/mg,是β-榄香烯+雷公藤红素给药组的3.3倍。Tf-EC-MEs能够引发59.2%的Lovo细胞凋亡,显着高于β-榄香烯+雷公藤红素和EC-MEs组。Tf-EC-MEs对荷Lovo大肠癌裸鼠的肿瘤生长抑制率最为明显,且裸鼠60 d后生存率为37.5%。Tf-EC-MEs给药组裸鼠的肿瘤组织HE染色切片出现大量的细胞坏死,Ki-67免疫组化切片显示肿瘤细胞增殖被明显抑制。结论相较于β-榄香烯+雷公藤红素组和EC-MEs组,Tf-EC-MEs具有更优的协同靶向抗结直肠癌的潜力。
于海如[5]（2018）在《榄香烯对H1299/MCF7/SW480细胞上皮间质转化的影响》文中提出目的:肿瘤的转移是患者死亡的主要原因,肿瘤细胞发生转移是涉及多个步骤的过程,包括上皮间质转化、侵袭血管、通过血管迁移、外渗和在组织定植等,而上皮间质转化是肿瘤细胞发生转移的首要条件。因此,找到一种药物抑制肿瘤细胞上皮间质转化的发生,成为了近年来医学研究的热点。活血化瘀中药以其活血行气,破瘀消症等功效,在恶性肿瘤的治疗上取得了很好的疗效,其中以莪术、三棱、斑蝥等为代表的中药,能够有效抑制肿瘤细胞生长,在临床中应用广泛。榄香烯是从中药莪术中提取出的有效成分,对肿瘤细胞具有抑制作用。本实验通过研究榄香烯对肿瘤细胞功能学变化及其蛋白水平的表达情况,证实榄香烯对肺癌细胞H1299、乳腺癌细胞MCF7和结肠癌细胞SW480的抑制作用,明确其抑制肿瘤细胞发生上皮间质转化的作用机制。材料与方法:人肺癌细胞系H1299、乳腺癌细胞系MCF7和肠癌细胞系SW480均来自中国医科大学病理实验教研室,榄香烯注射液购自大连金港制药有限公司（生产批号:1612071）。肺癌细胞H1299、肠癌细胞SW480和乳腺癌细胞MCF7分别进行体外培养,培养条件为5%CO2、37℃培养箱中,1-2天换液1次,细胞生长至80%-90%融合状态时,用浓度为0、20、40、60μg/mL榄香烯注射液作用于H1299、MCF7和SW480细胞,作用24小时后,分别采用克隆形成实验检测各组细胞增殖能力;transwell实验检测各组细胞迁移和侵袭能力;Western blot实验检测上皮间充质转化（Epithelial-mesenchymal）相关蛋白,包括:E-钙黏蛋白（E-cadherin）、N-钙黏蛋白（N-cadherin）、锌指转录因子（Snail）、波形蛋白（Vimentin）、胞质紧密粘连蛋白1（ZO1）和紧密连接蛋白Occludin等蛋白的表达水平。采用SPSS 22.0软件（IBM,Armonk,NY,USA）进行统计分析,P<0.05为差异具有统计学意义。结果:1.随着榄香烯注射液处理浓度的升高,三种肿瘤细胞的集落形成数目明显减少,不同浓度榄香烯处理组与空白组相比,差异均具有统计学意义（P<0.05）。空白组（0μg/ml）和药物处理组（20μg/ml、40μg/ml、60μg/ml）H1299细胞集落形成数分别为90±5、46±5、29±5、15±5;MCF7细胞为135±5、78±5、60±5、40±5;SW480细胞为150±10、130±10、100±10、82±10。2.随着榄香烯注射液处理浓度的升高,三种肿瘤细胞的穿膜细胞数均明显下降,细胞的迁移和侵袭能力逐渐减弱。不同浓度榄香烯处理组与空白组相比,差异均具有统计学意义（P<0.05）。空白组（0μg/ml）和药物处理组（20μg/ml、40μg/ml、60μg/ml）H1299细胞穿膜数分别为120±10、75±10、43±5、20±5;MCF7细胞穿膜数分别为210±10、156±10、82±5、40±5;SW480细胞穿膜数为78±5、62±5、40±5、19±5。3.随着榄香烯注射液药物浓度的升高,EMT相关蛋白表达情况:E-cadherin、ZO1、Occludin蛋白表达水平升高;N-cadherin、Snail、Vimentin蛋白表达水平降低。结论:1.榄香烯可抑制H1299/MCF7/SW480细胞的增殖,并且随着药物浓度的增加,其抑制作用增强。2.榄香烯可抑制H1299/MCF7/SW480细胞的迁移能力,且具有浓度依赖性。3.榄香烯抑制H1299/MCF7/SW480细胞的迁移与侵袭可能是通过激活Snail表达,进而上调E-cadherin,下调N-cadherin的过程而实现的。
汪国玉,张蕾,耿亚迪,冯晓俊,陈昭琳,赵晓晓,姜玲,魏伟[6]（2018）在《β-榄香烯诱导人结肠癌细胞DLD-1的增殖抑制和凋亡研究》文中指出目的研究β-榄香烯对人结肠癌细胞DLD-1的增殖、凋亡及对活性氧（ROS）的影响。方法体外培养人结肠癌细胞DLD-1,采用MTS法、克隆形成实验检测不同浓度β-榄香烯对DLD-1细胞增殖的影响,使用Hoechst 33342染色、流式细胞术检测β-榄香烯对DLD-1细胞凋亡的影响,Western blot法检测凋亡相关蛋白表达水平的变化,DCFH-DA荧光染色检测ROS水平。结果 MTS法和克隆形成实验显示β-榄香烯对DLD-1细胞具有增殖抑制作用;Hoechst 33342染色显示β-榄香烯可使细胞出现细胞核聚缩和致密浓染的表现,Annexin V/PI双染结果显示,β-榄香烯可诱导DLD-1细胞出现凋亡;Western blot结果显示β-榄香烯作用后Cleaved PARP、Cleaved Caspase-9和Cleaved Caspase-3表达明显上调;ROS的测定结果显示β-榄香烯可使细胞内ROS水平显着升高。结论β-榄香烯能显着抑制人结肠癌细胞DLD-1增殖并能够促进细胞凋亡,ROS升高可能是其发挥作用的机制之一。
汪国玉[7]（2018）在《β-榄香烯对结直肠癌的影响及机制研究》文中研究说明结直肠癌发生在胃肠道中,是常见的恶性肿瘤,其早期没有显着症状,发现时已属于中晚期,肿瘤发生转移,患者平时生活受到限制,出现腹泻、局部腹痛、便血、排便习性的改变、交替性腹泻和便秘等症状,到晚期时则出现体重减轻、虚弱、贫血等其他全身症状。结直肠癌的发病率和死亡率在整个消化道系统肿瘤中占前3位,仅次于胃癌和食管癌。目前,结直肠癌的治疗是以手术为根本,结合化疗、免疫治疗、中医药治疗等多种疗法,从而达到升高手术的切除率,降低患者的复发率,获得长期生存机会。化学治疗是除手术外治疗结肠癌主要方法,但化疗药物的低选择性、毒副作用大,患者易复发等缺点,使得结直肠癌的治疗止步不前。迫使广大科研工作者积极寻求有效安全的抗结直肠癌药物。榄香烯是从姜科姜黄属植物温郁金（莪术）中提取的有效抗癌成分,作为国家二类抗肿瘤新药应用于癌性腹水、胸腔积液、脑性水肿、实体瘤的治疗。β-榄香烯是榄香烯的主要成分,具有抑制肿瘤生长,诱导肿瘤细胞凋亡,遏制肿瘤侵袭转移,抑制肿瘤血管生成,逆转化疗多药耐药等作用。β-榄香烯具有较高的亲脂性和小分子量,是传统抗肿瘤药物所特有的,使其易分布于多种器官中,特别是其更容易通过血脑屏障,对多种肿瘤如肝癌、胃癌、乳腺癌及脑癌等有明显的抑制作用。β-榄香烯可以单独或联合用于某些癌症,减少化疗和放疗的副作用,提高患者生存率,改善患者生活质量,降低复发风险,具有良好的抗肿瘤治疗前景。β-榄香烯对结直肠癌的作用研究较少,且具体的作用机制和特点尚未揭示。本课题旨在研究β-榄香烯对结直肠癌的治疗作用,并进一步探讨发生作用的相关分子机制。目的:明确β-榄香烯对结直肠癌的治疗作用及相关分子机制。方法:1.体内实验:选用雄性,42-48天,体重20-22 g的BALB/c裸鼠,右下肢皮下接种HT-29细胞,构建裸鼠结肠癌移植瘤模型,5天后于右下肢扣及肿块,随机分为5组,正常组（未建模）、模型组、β-榄香烯低剂量组（25 mg/kg）、β-榄香烯高剂量组（50 mg/kg）和阳性对照5-FU组（25 mg/kg）,每组6只,腹腔注射,连续给药21天,β-榄香烯给药组周一至周五每天给药一次,阳性对照5-FU组隔天给药一次,正常组和模型组给予相同体积的0.9%Na Cl溶媒。每2-3天一次称量各组裸鼠体重及瘤体大小,21天后颈椎脱臼处死裸鼠,分离瘤体并称重,取出心、肝、脾、肺、肾并称重,于10%甲醛溶液中固定。计算各组裸鼠瘤体积和抑瘤率,制作HT-29移植瘤裸鼠的组织石蜡切片,HE染色观察各组裸鼠移植瘤差异,TUNEL染色法检测移植瘤凋亡情况,免疫组化法检测移植瘤Ki-67,Cleaved Caspase-3和LC3B蛋白表达水平。2.体外实验:选取人结直肠癌细胞株DLD-1和HT-29进行体外实验,分别将不同浓度的β-榄香烯加入DLD-1和HT-29细胞培养液中培养。采用MTS法检测β-榄香烯对人结直肠癌细胞系细胞增殖活力的影响,克隆形成实验检测β-榄香烯对细胞增殖的影响,流式细胞术检测细胞周期变化,Hoechst 33342染色检测β-榄香烯对细胞核的影响,Annexin V/PI双染检测β-榄香烯对细胞膜磷酯酰丝氨酸外翻的影响,JC-1染色检测细胞线粒体膜电位变化,吖啶橙染色观察细胞酸性自噬泡形成情况,透射电镜观察凋亡小体和自噬体的形成,DCFH-DA荧光染色检测细胞ROS水平,Western blot法检测DLD-1和HT-29细胞Cleaved Caspase-3,Caspase-3,Cleaved Caspase-9,Caspase-9,Cleaved PARP,PARP,LC3B,SQSTM1,p-AMPK,AMPK,p-mTOR和mTOR蛋白表达水平。结果:1.β-榄香烯对结肠癌移植瘤裸鼠的作用1.1β-榄香烯对HT-29移植瘤裸鼠的体内毒性评价正常组裸鼠体重先增加后降低再增加,其余各组裸鼠体重增加后降低,药物组与模型组间体重差别不大,说明β-榄香烯对体重没有影响;各组裸鼠脏器指数比较,与正常组相比,因接种移植瘤,模型组与药物组裸鼠肝脏指数降低,其它脏器没有影响,药物组与模型组间各脏器差别不大,说明β-榄香烯对各脏器没有影响;提示β-榄香烯对移植瘤裸鼠没有毒性。1.2β-榄香烯对裸鼠HT-29移植瘤增殖能力的影响模型组肿瘤体积逐渐变大,肿瘤细胞完整,排列整密,Ki-67的表达多,与模型组相比,β-榄香烯（25 mg/kg,50 mg/kg）能够抑制裸鼠移植瘤瘤体体积,对肿瘤的抑制率增高,肿瘤细胞团体积明显减小,残存瘤细胞排列稀疏,肿瘤细胞部分坏死,降低肿瘤中Ki-67的表达水平,与阳性药5-FU结果一致,表明β-榄香烯能抑制HT-29裸鼠移植瘤的增殖生长。1.3β-榄香烯对裸鼠HT-29移植瘤凋亡和自噬的影响与模型组相比,β-榄香烯（25 mg/kg,50 mg/kg）能够升高肿瘤细胞中TUNEL阳性细胞数,升高凋亡相关蛋白Cleaved Caspase-3的表达水平,促进Caspase-3蛋白发生剪切,升高自噬相关蛋白LC3B的表达水平,表明β-榄香烯能够诱导裸鼠HT-29移植瘤发生凋亡和产生自噬。2.β-榄香烯对人结直肠癌细胞DLD-1和HT-29的作用2.1β-榄香烯对DLD-1和HT-29细胞增殖的影响空白对照组细胞完整,状态良好,与空白对照组相比,随着β-榄香烯（50,100,200,300,400,500,600μmol/L）浓度的升高,细胞存活数目减少、细胞间隙变大,细胞皱缩且形态模糊,β-榄香烯（50,100,200,300μmol/L）使细胞克隆数目变少,细胞集落数逐渐减少,引起细胞S期和G2/M期周期阻滞,表明β-榄香烯显着抑制了人结直肠癌细胞的增殖能力。2.2β-榄香烯对DLD-1和HT-29细胞凋亡的影响与空白对照组相比,随着β-榄香烯（50,100,200,300μmol/L）浓度的增加,部分DLD-1和HT-29细胞的细胞核成碎块状,核染色质固缩,β-榄香烯促进了DLD-1和HT-29细胞细胞膜磷脂酰丝氨酸外翻,降低了细胞线粒体膜电位,β-榄香烯（100,200,300μmol/L）升高凋亡相关蛋白Cleaved Caspase-3,Cleaved Caspase-9和Cleaved PARP的表达水平,对Caspase-3,Caspase-9和PARP蛋白的表达无影响,促进了Caspase-3,Caspase-9和PARP蛋白发生剪切,β-榄香烯（200μmol/L）还使HT-29细胞核裂解,出现凋亡小体,这些结果表明β-榄香烯能够诱导人结直肠癌细胞发生凋亡。2.3β-榄香烯对DLD-1和HT-29细胞自噬的影响与空白对照组相比,β-榄香烯（300μmol/L）使HT-29细胞内出现自噬囊泡双层膜结构,具有线粒体和溶酶体样结构,β-榄香烯（50,100,200,300μmol/L）促进了HT-29细胞内酸性囊泡细胞器（自噬溶酶体）增多,β-榄香烯（100,200,300μmol/L）升高了DLD-1和HT-29细胞自噬相关蛋白LC3B和SQSTM1的表达水平,这些结果表明β-榄香烯诱导人结直肠癌细胞内自噬体的形成,增高自噬水平。2.4β-榄香烯对DLD-1和HT-29细胞ROS水平、p-AMPK,AMPK,p-mTOR和mTOR蛋白表达的影响与空白对照组相比,β-榄香烯（50,100,200,300μmol/L）升高了DLD-1和HT-29细胞内ROS水平,β-榄香烯（100,200,300μmol/L）升高了p-AMPK蛋白的表达水平,降低了p-mTOR蛋白的表达水平,对总的AMPK和总的mTOR蛋白的表达无影响,表明β-榄香烯能够促进人结肠癌细胞ROS水平升高和AMPK蛋白磷酸化,抑制mTOR蛋白磷酸化。结论:β-榄香烯通过影响移植瘤的增殖、凋亡、自噬过程抑制裸鼠结肠癌移植瘤的发生与发展,具有抗结肠癌作用,显着抑制人结直肠癌细胞DLD-1和HT-29增殖,诱导结直肠癌细胞凋亡和自噬的发生,β-榄香烯对结直肠癌的治疗作用与升高ROS水平、激活AMPK和降低mTOR磷酸化水平有关。
谢恬,李铖璐,王淑玲,曾昭武,王芬,赵荣[8]（2014）在《榄香烯脂质体系列靶向抗癌天然药物基础研究进展》文中研究表明榄香烯（elemene）是从天然中药姜科植物莪术、郁金提取分离的倍半萜烯类化合物。其化学名为1-甲基-1-乙烯基-2,4-二异丙基环己烷,分子式C15H24,分子量为204.35。早在《神农本草经》就有关于莪术消症散结、破血止痛,治疗症瘕积聚的记载。榄香烯脂质体（elemene liposome）注射液和口服乳由大连金港药业研发生产,该制剂由大豆磷脂、胆固
何琳[9]（2013）在《β-榄香烯对卵巢癌细胞耐药株A2780/PTX的逆转作用研究》文中进行了进一步梳理目的：研究β-榄香烯对人卵巢癌细胞株A2780及其耐药细胞株A2780/PTX的抑制、增敏及逆转耐药性作用，探讨其可能的作用机制。方法：本实验采用人卵巢癌细胞株A2780及其耐药细胞株A2780/PTX为研究对象，实验组用含不同浓度（1.25ug/ml、2.5ug/ml、5ug/ml、10ug/ml、20ug/ml、40ug/ml、80ug/ml、160ug/ml、320ug/ml、640ug/ml）β-榄香烯DMEMH培养液进行培养，采用MTT法测定不同浓度β-榄香烯对其的生长抑制率；以不同浓度的紫杉醇（0.5ng/ml、1ng/ml、2ng/ml、4ng/ml、8ng/ml、16ng/ml、32ng/ml、64ng/ml、128ng/ml、256ng/ml），单独或联合低毒性剂量的β-榄香烯（30ug/ml）作用人卵巢癌细胞株A2780及其耐药细胞株A2780/PTX，MTT法检测β-榄香烯对A2780/PTX细胞的增敏作用；β-榄香烯、PTX单独及联合作用A2780/PTX细胞，流式细胞仪检测对其A2780/PTX细胞周期的影响；Western-blot法检测50ug/ml β-榄香烯、10ng/ml PTX及联合用药作用A2780/PTX细胞后P-gp、XIAP和survivin基因表达情况。结果：1、不同浓度的β-榄香烯作用人卵巢癌细胞株A2780及其耐药细胞株A2780/PTX，可抑制卵巢癌细胞A2780及耐药株的生长， IC50分别为76.96ug/ml（A278024h）、100.7ug/ml（A2780/PTX24h）、53.06ug/ml（A278048h）及57.27ug/ml（A2780/PTX48h）。2、不同浓度的紫杉醇单独或联合低毒性剂量的β-榄香烯（30ug/ml）作用人卵巢癌细胞株A2780及其耐药细胞株A2780/PTX，其IC50值分别为6.027ng/ml（A2780+PTX）,2.72ng/ml（A2780+PTX+ELE）,44.98ng/ml（A2780/PTX+PTX）及10.25ng/ml（A2780/PTX+PTX+ELE）。PTX单独作用时，耐药细胞株IC50值是敏感株的7.46倍，而当联合β-榄香烯用药时，耐药细胞株IC50值是敏感株的3.77倍，下降了一倍；敏感株单独用药的IC50值是联合用药时的2.22倍，而耐药株单独用药的IC50值是联合用药时的4.39倍。3、（20ug/ml、50ug/ml）β-榄香烯、（5ng/ml、10ng/ml）PTX单独给药均能使A2780/PTX细胞G2/M期比例显着升高，并与相应药物剂量呈正相关；而β-榄香烯及PTX联合用药则显着使细胞累积在G2/M期。4、50ug/mlβ-榄香烯单独或联合10ng/ml PTX用药均可明显下调A2780/PTX细胞P-gp、XIAP和survivin的表达，而PTX单独用药时则基本无变化。结论：1、β-榄香烯乳对人卵巢癌细胞株A2780及其耐药细胞株A2780/PTX的增殖有明显的抑制作用，其抑制作用有剂量及时间依赖性。2、β-榄香烯乳在低细胞毒性浓度下对PTX作用的A2780细胞及耐药株细胞A2780/PTX均有不同程度的增敏作用，并且对耐药株的作用更强，可显着逆转PTX的多药耐药性。3、β-榄香烯、PTX单独或联合用药均可使细胞阻滞在G2/M期，二种药物联合使用有正协同作用，诱导细胞更多累积在G2/M期。4、β-榄香烯单独或联合PTX用药均可明显下调P-gp、XIAP和survivin的表达，β-榄香烯对PTX抗肿瘤细胞的增敏及逆转耐药性机制可能是降低耐药相关基因P-gp、XIAP和survivin的表达。
吴稚冰,马胜林[10]（2011）在《β-榄香烯抗肿瘤作用的研究进展》文中认为β-榄香烯是从莪术中提取的具有广谱抗肿瘤作用的药物,并且与放疗和热化疗具有协同增效作用。就β-榄香烯及联合放疗、热化疗抗肿瘤作用的实验和临床研究进行综述,为相关研究提供依据。
二、β-榄香烯诱导结肠癌Lovo细胞凋亡的作用（论文开题报告）
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
本文主要提出一款精简64位RISC处理器存储管理单元结构并详细分析其设计过程。在该MMU结构中,TLB采用叁个分离的TLB,TLB采用基于内容查找的相联存储器并行查找,支持粗粒度为64KB和细粒度为4KB两种页面大小,采用多级分层页表结构映射地址空间,并详细论述了四级页表转换过程,TLB结构组织等。该MMU结构将作为该处理器存储系统实现的一个重要组成部分。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
三、β-榄香烯诱导结肠癌Lovo细胞凋亡的作用（论文提纲范文）
（1）榄香烯抗肿瘤作用机制研究进展（论文提纲范文）
| 1 直接抗肿瘤作用 |
| 1.1 诱导肿瘤细胞凋亡 |
| 1.1.1 阻滞细胞周期 |
| 1.1.2 调控相关基因表达水平 |
| 1.1.3 抑制端粒酶活性 |
| 1.1.4 促使细胞内Ca2+稳态失衡 |
| 1.2 抗血管生成 |
| 2 诱导肿瘤细胞分化 |
| 3 抑制肿瘤细胞侵袭和迁移 |
| 4 调节机体免疫功能 |
| 5 提高耐药肿瘤细胞对化疗的敏感性 |
| 6 结语 |
（2）β-榄香烯对结肠癌细胞耐长春新碱的影响（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 主要仪器 |
| 1.3 细胞传代培养 |
| 1.4 CCK8实验 |
| 1.5 SW-480细胞凋亡测定 |
| 1.6 β-榄香烯对WEE1的抑制作用 |
| 1.7 WEE1过表达转染实验 |
| 1.8 统计学方法 |
| 2 结果 |
| 2.1 β-榄香烯增强VCR对SW-480细胞株增殖能力的抑制效应 |
| 2.2 β-榄香烯增强VCR对SW-480细胞凋亡的诱导效应 |
| 2.3 β-榄香烯呈剂量、时间依赖性抑制WEE1蛋白表达 |
| 2.4结肠癌细胞中WEE1表达 |
| 2.5过表达WEE1减弱β-榄香烯对VCR敏感性的作用 |
| 3讨论 |
（3）β-榄香烯对人乳腺癌MCF-7细胞株体内外生长的影响及机制研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 英文缩略词表(Abbreviation) |
| 1 前言 |
| 第一章 β-榄香烯对人乳腺癌MCF-7细胞体内研究 |
| 2 材料与方法 |
| 2.1 实验材料 |
| 2.1.1 实验用细胞株 |
| 2.1.2 实验动物 |
| 2.1.3 实验主要试剂与药物 |
| 2.2 实验方法 |
| 2.2.1 细胞培养 |
| 2.2.2 乳腺癌裸鼠模型建立与分组 |
| 2.2.3 肿瘤质量抑制率测定 |
| 2.2.4 HE染色 |
| 2.2.5 TUNEL染色 |
| 2.2.6 免疫组化染色检测Ki-67,LOX和CyclinD1蛋白的表达 |
| 2.2.7 免疫荧光检测p-mTOR蛋白的表达 |
| 2.2.8 统计学处理 |
| 3 实验结果 |
| 3.1 裸鼠移植瘤生长情况 |
| 3.2 裸鼠肿瘤的生长曲线及瘤体重量 |
| 3.3 β-榄香烯对MCF-7移植瘤裸鼠增殖能力的影响 |
| 3.4 TUNEL染色法检测细胞凋亡 |
| 3.5 β-榄香烯通过mTOR/LOX途径在体内抑制乳腺癌细胞的生长 |
| 第二章 β-榄香烯对人乳腺癌MCF-7细胞体外研究 |
| 2 材料与方法 |
| 2.1 实验材料 |
| 2.1.1 实验用细胞株 |
| 2.1.2 实验药物 |
| 2.1.3 实验主要试剂 |
| 2.1.4 .实验仪器 |
| 2.1.5 主要试剂配制 |
| 2.2 实验方法 |
| 2.2.1 细胞培养 |
| 2.2.2 MTS比色法检测人乳腺癌细胞MCF-7的活力 |
| 2.2.3 CFDA-SE染色法检测人乳腺癌细胞MCF-7的增殖 |
| 2.2.4 克隆形成实验 |
| 2.2.5 细胞周期检测 |
| 2.2.6 Hoechst33258染色法检测细胞核形态变化 |
| 2.2.7 AnnexinⅤ-FITC结合流式细胞仪检测细胞凋亡率 |
| 2.2.8 MCF-7线粒体膜电位检测 |
| 2.2.9 人乳腺癌细胞MCF-7蛋白的提取 |
| 2.2.10 蛋白定量 |
| 2.2.11 蛋白印记(Western Blot)方法 |
| 2.2.12 统计学处理 |
| 3 实验结果 |
| 3.1 β-榄香烯对乳腺癌细胞增殖能力的影响 |
| 3.1.1 β-榄香烯对人乳腺癌细胞MCF-7形态和活力的影响 |
| 3.1.2 β-榄香烯对MCF-7细胞克隆形成能力的影响 |
| 3.1.3 CFDA-SE染色法检测β-榄香烯对MCF-7细胞增殖的抑制作用 |
| 3.1.4 β-榄香烯通过mTOR/LOX通路诱导MCF-7细胞周期阻滞在G2/M期 |
| 3.2 β-榄香烯对乳腺癌细胞凋亡的影响 |
| 3.2.1 β-榄香烯对MCF-7细胞核的影响 |
| 3.2.2 β-榄香烯诱导乳腺癌细胞凋亡 |
| 3.2.3 β-榄香烯对MCF-7细胞线粒体膜电位的影响 |
| 3.2.4 β-榄香烯对MCF-7细胞凋亡相关蛋白CleavedCaspase-9、Cleaved Caspase-7、Cleaved Caspase-3、Caspase-9、Caspase-7、Caspase-3、Bax和Bcl-2蛋白表达的影响 |
| 4 讨论 |
| 4.1 β-榄香烯抑制MCF-7细胞的活力和增殖 |
| 4.2 β-榄香烯对乳腺癌细胞凋亡和细胞周期的影响 |
| 4.3 β-榄香烯抑制乳腺癌的发生发展可能的作用机制 |
| 5 结论 |
| 参考文献 |
| 综述 β-榄香烯的分子靶点及其在癌症治疗中的潜在作用 |
| 参考文献 |
| 附录 |
| 致谢 |
（4）转铁蛋白功能化的β-榄香烯-雷公藤红素共传递微乳协同靶向抗结直肠癌研究（论文提纲范文）
| 1 材料 |
| 1.1 实验动物 |
| 1.2 细胞 |
| 1.3 药品与试剂 |
| 1.4 仪器 |
| 2 方法 |
| 2.1 β-榄香烯-雷公藤红素联合给药的细胞毒活性检测 |
| 2.1.1 细胞培养 |
| 2.1.2 细胞毒活性检测 |
| 2.2 微乳制备及表征 |
| 2.2.1 药物含量测定 |
| 2.2.2 Tf-EC-MEs制备 |
| 2.2.3 表面性质及形态学考察 |
| 2.2.4 包封率测定 |
| 2.2.5 稳定性考察 |
| 2.3 药物释放研究 |
| 2.4 微乳体外细胞活性研究 |
| 2.4.1 对细胞增殖的影响 |
| 2.4.2对细胞摄取的影响 |
| 2.4.3 微乳对细胞凋亡的影响 |
| 2.5 体内抗肿瘤活性评价 |
| 2.5.1 模型制备、给药及指标检测 |
| 2.5.2 病理学检测 |
| 3 结果 |
| 3.1 β-榄香烯、雷公藤红素联合给药对结直肠癌细胞存活率的影响 |
| 3.2 微乳形态表征 |
| 3.3 药物释放特性 |
| 3.4 微乳体外细胞活性 |
| 3.4.1 微乳对细胞增殖的影响 |
| 3.4.2 微乳对Lovo细胞摄取的影响 |
| 3.4.3 微乳对Lovo细胞凋亡的影响 |
| 3.5 体内抗肿瘤活性评价 |
| 4 讨论 |
（5）榄香烯对H1299/MCF7/SW480细胞上皮间质转化的影响（论文提纲范文）
| 中文论着摘要 |
| 英文论着摘要 |
| 英文缩略词表 |
| 前言 |
| 材料与方法 |
| 实验结果 |
| 讨论 |
| 结论 |
| 本研究创新性的自我评价 |
| 参考文献 |
| 综述 榄香烯抗肿瘤作用的研究进展 |
| 参考文献 |
| 个人简介 |
| 在学期间科研成绩 |
| 致谢 |
（6）β-榄香烯诱导人结肠癌细胞DLD-1的增殖抑制和凋亡研究（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 药品与试剂 |
| 1.2 细胞培养 |
| 1.3 MTS法检测细胞活力 |
| 1.4 克隆形成实验 |
| 1.5 Hoechst 33342染色实验 |
| 1.6 Annexin V/PI双染法检测细胞凋亡 |
| 1.7 Western blot法检测凋亡相关蛋白的表达 |
| 1.8 ROS检测 |
| 1.8.1 荧光显微镜观察ROS水平 |
| 1.8.2 流式细胞术检测ROS水平 |
| 1.9 统计学处理 |
| 2 结果 |
| 2.1 β-榄香烯对DLD-1细胞活力的影响 |
| 2.2 β-榄香烯对DLD-1细胞克隆形成能力的影响 |
| 2.3 β-榄香烯对DLD-1细胞核的影响 |
| 2.4 β-榄香烯对DLD-1细胞凋亡的影响 |
| 2.5 β-榄香烯对DLD-1细胞凋亡相关蛋白表达的影响 |
| 2.6 DLD-1细胞内ROS的表达 |
| 3 讨论 |
（7）β-榄香烯对结直肠癌的影响及机制研究（论文提纲范文）
| 英文缩略词对照(Abbreviation) |
| 摘要 |
| Abstract |
| 1.前言 |
| 实验一 β-榄香烯对结肠癌移植瘤裸鼠的治疗作用 |
| 2.材料与方法 |
| 2.1 实验材料 |
| 2.1.1 实验用细胞株 |
| 2.1.2 实验动物 |
| 2.1.3 实验药物 |
| 2.1.4 实验试剂 |
| 2.1.5 主要仪器 |
| 2.2 实验方法 |
| 2.2.1 细胞培养 |
| 2.2.2 结肠癌裸鼠模型建立与分组 |
| 2.2.3 制作石蜡切片 |
| 2.2.4 HE染色 |
| 2.2.5 TUNEL染色 |
| 2.2.6 免疫组化染色检测Ki-67,Cleavedcaspase-3和LC3B蛋白的表达 |
| 2.2.7 统计学处理 |
| 3.实验结果 |
| 3.1 裸鼠的一般状态和肿瘤生长情况 |
| 3.2 β-榄香烯对HT-29移植瘤裸鼠的体内毒性评价 |
| 3.3 β-榄香烯对HT-29移植瘤裸鼠增殖能力的影响 |
| 3.4 β-榄香烯对裸鼠HT-29移植瘤凋亡和自噬的影响 |
| 实验二 β-榄香烯对结直肠癌系细胞株DLD-1和HT-29的作用 |
| 2.材料与方法 |
| 2.1 实验材料 |
| 2.1.1 实验用细胞株 |
| 2.1.2 实验药物 |
| 2.1.3 实验试剂 |
| 2.1.4 主要试剂配制 |
| 2.1.5 主要仪器 |
| 2.2 实验方法 |
| 2.2.1 细胞培养 |
| 2.2.2 MTS法检测β-榄香烯对细胞活力的影响 |
| 2.2.3 克隆形成实验 |
| 2.2.4 细胞周期检测 |
| 2.2.5 Hoechst33342染色实验 |
| 2.2.6 AnnexinV/PI双染法检测细胞膜磷脂酰丝氨酸外翻 |
| 2.2.7 JC-1染色检测细胞线粒体膜电位 |
| 2.2.8 AO染色检测酸性细胞器的产生 |
| 2.2.9 透射电镜观察凋亡和自噬体的形成 |
| 2.2.10 DCFH-DA荧光染色检测细胞ROS水平 |
| 2.2.11 Western blot 法检测 DLD-1 和 HT-29 细胞 Cleaved Caspase-3,Caspase-3、Cleaved Caspase-9,Caspase-9,Cleaved PARP,PARP,LC3B,SQSTM1,p-AMPK,AMPK,p-m TOR 和 m TOR 蛋白表达水平 |
| 2.2.12 统计学处理 |
| 3.实验结果 |
| 3.1 β-榄香烯对结直肠癌细胞增殖能力的影响 |
| 3.1.1 β-榄香烯对DLD-1和HT-29细胞形态和活力的影响 |
| 3.1.2 β-榄香烯对DLD-1和HT-29细胞克隆形成能力的影响 |
| 3.1.3 β-榄香烯对DLD-1和HT-29细胞周期的影响 |
| 3.2 β-榄香烯对结直肠癌细胞凋亡的影响 |
| 3.2.1 β-榄香烯对DLD-1和HT-29细胞核的影响 |
| 3.2.2 β-榄香烯对DLD-1和HT-29细胞磷脂酰丝氨酸外翻的影响 |
| 3.2.3 β-榄香烯对DLD-1和HT-29细胞线粒体膜电位的影响 |
| 3.2.4 透射电镜观察β-榄香烯对HT-29细胞凋亡的影响 |
| 3.2.5 β-榄香烯对DLD-1和HT-29细胞凋亡相关蛋白CleavedCaspase-3,Caspase-3,CleavedCaspase-9,Caspase-9,CleavedPARP和PARP蛋白表达的影响 |
| 3.3 β-榄香烯对结直肠癌细胞自噬的影响 |
| 3.3.1 β-榄香烯对HT-29细胞酸性细胞器的影响 |
| 3.3.2 透射电镜观察β-榄香烯对HT-29细胞自噬体的形成 |
| 3.3.3 β-榄香烯对DLD-1和HT-29细胞自噬相关蛋白LC3B和SQSTM1蛋白表达的影响 |
| 3.4 β-榄香烯对DLD-1和HT-29细胞内ROS水平的影响 |
| 3.5 β-榄香烯对DLD-1和HT-29细胞p-AMPK,AMPK,p-mTOR和mTOR蛋白表达的影响 |
| 4.讨论 |
| 5.结论 |
| 6.参考文献 |
| 附录 |
| 致谢 |
| 综述：β-榄香烯抗肿瘤作用机制研究进展 |
| 参考文献 |
（8）榄香烯脂质体系列靶向抗癌天然药物基础研究进展（论文提纲范文）
| 1 莪术抗肿瘤作用的中医理论 |
| 2 抑制肿瘤细胞增殖 |
| 3 诱导肿瘤细胞凋亡 |
| 4 抑制肿瘤远处转移 |
| 4.1抑制肿瘤细胞浸润、转移 |
| 4.2抑制肿瘤血管生成 |
| 5 榄香烯脂质体联合化疗、放疗协同增效作用 |
| 5.1化疗协同作用 |
| 5.2逆转肿瘤细胞耐药 |
| 5.3放疗增敏作用 |
| 6 激活抗肿瘤免疫 |
| 7 结语和展望 |
（9）β-榄香烯对卵巢癌细胞耐药株A2780/PTX的逆转作用研究（论文提纲范文）
| 中文摘要 |
| Abstract |
| 前言 |
| 材料与方法 |
| 结果 |
| 讨论 |
| 结论 |
| 参考文献 |
| 综述 |
| 参考文献 |
| 攻读学位期间公开发表的论文 |
| 致谢 |
（10）β-榄香烯抗肿瘤作用的研究进展（论文提纲范文）
| 1 基础研究 |
| 1.1 体外抗肿瘤研究 |
| 1.1.1 直接抗肿瘤作用 |
| 1.1.2 化疗增敏作用 |
| 1.1.3 热增敏作用 |
| 1.1.4 放疗增敏作用 |
| 1.2 体内抗肿瘤研究 |
| 1.2.1 免疫增强及化疗协同作用 |
| 1.2.2 放疗增敏作用 |
| 1.2.3 联合热疗实验研究 |
| 2 临床研究 |
| 2.1 联合化疗临床研究 |
| 2.2 联合放疗临床研究 |
| 2.3 联合热疗临床研究 |
四、β-榄香烯诱导结肠癌Lovo细胞凋亡的作用（论文参考文献）
- [1]榄香烯抗肿瘤作用机制研究进展[J]. 王乔宇,赵志刚. 药学进展, 2020(07)
- [2]β-榄香烯对结肠癌细胞耐长春新碱的影响[J]. 吴敏,李丽,顾文燕. 西部中医药, 2020(07)
- [3]β-榄香烯对人乳腺癌MCF-7细胞株体内外生长的影响及机制研究[D]. 李艺. 安徽中医药大学, 2020(03)
- [4]转铁蛋白功能化的β-榄香烯-雷公藤红素共传递微乳协同靶向抗结直肠癌研究[J]. 沈展,陈文斌. 中草药, 2019(02)
- [5]榄香烯对H1299/MCF7/SW480细胞上皮间质转化的影响[D]. 于海如. 辽宁中医药大学, 2018(07)
- [6]β-榄香烯诱导人结肠癌细胞DLD-1的增殖抑制和凋亡研究[J]. 汪国玉,张蕾,耿亚迪,冯晓俊,陈昭琳,赵晓晓,姜玲,魏伟. 安徽医科大学学报, 2018(04)
- [7]β-榄香烯对结直肠癌的影响及机制研究[D]. 汪国玉. 安徽医科大学, 2018(12)
- [8]榄香烯脂质体系列靶向抗癌天然药物基础研究进展[J]. 谢恬,李铖璐,王淑玲,曾昭武,王芬,赵荣. 中国中西医结合杂志, 2014(04)
- [9]β-榄香烯对卵巢癌细胞耐药株A2780/PTX的逆转作用研究[D]. 何琳. 苏州大学, 2013(01)
- [10]β-榄香烯抗肿瘤作用的研究进展[J]. 吴稚冰,马胜林. 中华中医药学刊, 2011(10)